17-0891-01-GE percoll细胞分离液1L现货供应

GE percoll细胞分离液1L现货供应

二、操作方法及注意事项
1. 不同浓度(密度)Percoll溶液的制备: 先用9份Percoll与1份8.5%NaCl或1.5MPBS混合达到生理性渗透压，然后用生理溶液(0.85% NaCl或0.15M PBS)稀释到所需浓度。
Percoll浓度(%)：　 70　　 　   60　　　  50　　  40　　   30　　　 20
比重g/ml　　：  1.090           1.077       1.067      1.056      1.043       1.031
2. 不连续密度梯度Percoll层的制备: 先将试管壁用牛血清湿润，除去多余血清，这种预处理可使逐层叠加的Percoll液平稳沿管壁流下，使形成满意的界面。在制备过程中一般用长针头注射器从高密度向低密度逐层放置，有时相邻两层Percoll比重相差不大时，可将GE percoll PLUS 淋巴细胞分离液放入注射器中，小针头斜面紧贴管壁，任其自然慢慢流下。
3. 装样：样品体积和细胞浓度根据不同细胞而异，一般加样体积不宜过大，细胞浓度也不可过高，否则会影响细胞的分离和回收。
4. 离心：一般采用离心力为400g，时间20～25min。由于多层Percoll之间密度差别不大，因此离心机加速、降速时要慢，要平稳。
5. 取样：当所要分离的细胞绝大部分在两层的界面时，可逐层去除Percoll液后收集界面部位的细胞；有时大部分细胞位于Percoll层中，则需要逐层收集。收获含有Percoll液的细胞经2次洗涤后可供培养或检测用。
 

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三、分离纯化细胞举例
1. 富含NK活性大颗粒淋巴细胞(LGL)的纯化:按顺序由下向上逐层加50%、47.5%、45%、42.5%和40%五种不同密度的Percoll,如用10ml试管(或塑料管)分离,每层Percoll约1.2～1.5ml，初步从外周血中分离的PBMC细胞1×108悬于1ml培基中，按要求装样、离心和取样。一般富含NK杀伤活性的LGL细胞位于42.5%与45%Percoll界面以及上下二层的Percoll液中。
2. 纯化淋巴母细胞和除死细胞：分别叠加50%和30%Percoll液。收取经PHA(或其它抗原、有丝分裂原)刺激PBMC,或含有较高比例异型的PBMC(如肾综合征出血热患者)，按要求装样、离心和取样。位于管底的淋巴细胞为小淋巴细胞；两层Percoll之间为淋巴母细胞，纯度和回收率在80%以上，位于30%Percoll表面是死细胞。收获淋巴母细胞可进行表型、结构以及功能的研究。

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四、人不同血细胞的漂浮密度

五、GE percoll PLUS 淋巴细胞分离液相关问题　
问：percoll连续梯度怎么配制？比如15%---75%的percoll连续梯度?

答：根据实验需要的具体密度梯度决定的，根据要分离的不同细胞种类，数量等等，也有用原液配的。也有用80%配的，不一定的。另外，percoll本身是低渗透压的，要用高渗透压溶液配成生理等渗透压溶液，然后使用，不然，细胞容易破裂。一般是先用9份Percoll与1份8.5%NaCl或1.5MPBS混合达到生理性渗透压，然后用生理溶液(0.85% NaCl或0.15M PBS)稀释到所需浓度。即取Percoll原液与10倍浓缩的PBS以9:1的比例混合，此时溶液为*Percoll，比重是1.127，毫克分子渗透压浓度为290mOsmol/kg

Percoll浓度(%) ： 70         60          50         40         30         20
比重g/ml        ： 1.090   1.077    1.067    1.056    1.043     1.031